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技術(shù)文章

免疫組化技術(shù)要點和常見問題點擊次數(shù):3583 更新時間:2010-12-27

                          免疫組化技術(shù)要點和常見問題

在免疫組化過程中,為了更好的說明問題和查找原因,設(shè)置陽性對照片(已知的高表達(dá)相應(yīng)抗原的組織)和陰性對照組織片(不加一抗但是加二抗系統(tǒng)/不加任何抗體兩組),所有操作過程應(yīng)*一致。
染色弱或者沒有染色(按照先后順序,先排除一些簡單的原因):

試劑使用順序錯誤或者漏加試劑重復(fù)實驗,保證每一步均正確
二抗和一抗不匹配選擇匹配的二抗
底物和酶不匹配選用匹配的底物
酶失活換用新的酶(將酶和底物混合,看是否顯色?)
組織中沒有待測抗原表達(dá)或者表達(dá)水平低使用陽性對照片
抗體濃度太低增加抗體濃度.使用不同濃度的抗體,決定*濃度
抗體孵育時間不充分延長抗體孵育時間
底物孵育不充分延長底物孵育時間
抗體儲存不當(dāng),導(dǎo)致失效將抗體分裝,低溫保存 (-20 to -70 C) ,避免反復(fù)凍溶。稀釋抗體在4保存1-2周,避免時間過長?;蛘吒鶕?jù)說明書進(jìn)行恰當(dāng)?shù)谋4?br />一抗失效換用新的一抗
二抗失效換用新的抗體(能否成功與其它一抗配合?)
脫石臘不充分延長脫臘時間或者換用新的二甲苯
組織固定不充分或者不當(dāng)增加固定時間或者改用不同的固定方法
組織固定過度減少固定時間。若已固定過度,則需使用正確的或者推薦的抗原修復(fù)方法
復(fù)染試劑與底物系統(tǒng)不匹配選擇正確的復(fù)染試劑(不加復(fù)染劑,看是否有組織染色?)
封片劑不正確選擇正確的封片劑

 

染色背景高:
可能原因解決辦法
洗片不充分每步之間至少洗片3次
組織含有內(nèi)源性的酶,如HRP/AP在加入一抗之前使用3%的H2O2甲醇封閉內(nèi)源性HRP活性,使用左旋咪唑(levamisole)溶液阻斷內(nèi)源性AP活性?;蛘邠Q用葡萄糖氧化酶系統(tǒng)
組織含有內(nèi)源性生物素(尤其是腎臟、肝和脾)在加入一抗之前,血清封閉之后使用avidin/biotin阻斷試劑?;蛘弑苊馐褂胋iotin-avidin系統(tǒng)或改用IF方法(直接將酶和底物加到組織片上,看是否顯色?)
一抗的非特異性結(jié)合或者抗體濃度過高增加一抗的稀釋度
二抗和組織非特異性結(jié)合使用與二抗來源相同的正常動物血清(一般是10%)封閉,必要時可以將血清濃度加大
組織固定不充分,抗原擴散Increase duration of postfixation
使用小鼠來源的二抗檢測小鼠組織在加一抗之前使用MouseOnMouse封閉試劑
干片染色過程中避免出現(xiàn)干片現(xiàn)象
 
 
染色強度過大:
可能原因 解決辦法
一抗或者二抗?jié)舛冗^高降低抗體濃度?;蛘呤褂貌煌臐舛?,決定*染色濃度
孵育時間過長減少孵育時間
孵育溫度太高降低孵育溫度,在4℃過夜或者37℃0.5-1小時或者RT
底物孵育時間過長減少孵育時間
干片染色過程中避免出現(xiàn)干片現(xiàn)象

 

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